微生物的大肠菌群测定和细菌总数如何测定，大肠菌群的测定在食品卫生检验中有什么意义？检测大肠菌群的目的是为了预防食物中毒。一般在食品安全检测中，大肠杆菌常被用作指示菌，具体来说，许多致病菌经常与大肠杆菌一起在食物中繁殖，检测大肠杆菌可以间接反映食品的微生物污染情况，如果大肠杆菌超标，理论上认为食品被其他致病菌污染的概率增加。另一方面，有些大肠杆菌，如出血性大肠杆菌，本身就是需要监测的致病菌；饮用水中大肠杆菌数量的测定一般来说，饮用水中的微生物指标不应该检测大肠杆菌，而应该检测大肠菌群，大肠菌群包括大肠杆菌但其他一些细菌也是分类的。

1，MPN表中的接种量是指样品原液的量，如果是1ml，也就是说10倍稀释需要10ml。2.九管法:一般选用10倍稀释液吸收10mL至3管双料，然后1mL至3管单料，再用100倍稀释液吸收1 ml至3管单料。3.双料和单料由吸收的液体体积决定，不需要换算成样品原液。4.“如果第一次接种，需要10ML接种到单乳糖胆盐中，对吗？

稀释平板涂布法1。样品稀释液的配制准确称取待测样品10g，置于装有90ml无菌水和小玻璃珠的250ml三角瓶中，用手或在摇床上摇动20min，使微生物细胞分散，静置2030s，得101稀释液；用1ml无菌吸管吸取101稀释lml，转移至装有9ml无菌水的试管中，吹吸3次，混匀菌液，得102稀释液；另一支无菌吸管吸取1ml 102稀释液，移入装有9ml无菌水的试管中，吸三次，得l03稀释液；以此类推，通过连续稀释制成一系列稀释的细菌溶液，如104、105、106、107、108和109。

当样品中待检测的细菌数量较大时，稀释度应较高，反之亦然。通常用107、108和109的稀释度来测定细菌数，用104、105和106的稀释度来测定土壤中的细菌数，用103、104和105的稀释度来测定放线菌，用102、103和104的稀释度来测定真菌。2.平板接种培养平板接种培养有两种方法:混合平板培养和涂抹平板培养。

什么企业的大肠菌群？通常我们采用多管发酵法，执行标准是HJ/T3472007。这个方法是B类，还有纸张法，很多环保部门也采用，但是这个方法是C类..首选多管发酵，属于经典方法。我在环保部门从事细菌学项目的测定，采用的就是这种经典的方法。对于河流等地表水，或者地表水饮用水源地、城市污水处理厂、肉禽养殖场等企业，对水样中的粪大肠菌群进行分析。

检测大肠菌群，以防止食物中毒。大肠菌群是指示食品是否被污染的指标。一般在食品安全检测中，大肠杆菌常被用作指示菌。具体来说，许多致病菌经常与大肠杆菌一起在食物中繁殖。检测大肠杆菌可以间接反映食品的微生物污染情况。如果大肠杆菌超标，理论上认为食品被其他致病菌污染的概率增加。另一方面，有些大肠杆菌，如出血性大肠杆菌，本身就是需要监测的致病菌；

饮用水中的微生物指标一般不检测大肠杆菌，而应检测大肠菌群，大肠菌群包括大肠杆菌但其他一些细菌也有分类。大肠菌群是饮用水中含有致病菌可能性的指标。大肠菌群含量越多，饮用水中含有致病菌的可能性越大，无法检出合格的饮用水大肠菌群。应按国家标准《GB/T5750.122006生活饮用水标准检验方法》进行检验。

第二，在培养皿中加入15毫升事先准备好的伊红-亚甲蓝培养基，浓缩备用。第三，用醋酸纤维素滤膜过滤样品(水)；第四，之后取滤膜(含菌)放在培养基上，使滤膜完全贴在培养基上，没有气泡。第五，培养基37度培养20小时。第六，根据滤膜连续几天出现的深紫色菌落数(即大肠杆菌数)得出结论。

供你参考:1。正确，但我认为我们需要再稀释一次，总共稀释三次。2.需要用24个平板，但不需要1: 10做6管。联系人1。你实际上做了四次稀释。3.假设12管革兰氏染色后都是革兰氏阴性无芽孢杆菌，乳糖发酵管都是产气的，那么就是大肠杆菌阳性。MPN表采用三个稀释度取适量食物，用BL培养基逐渐稀释至10倍、100倍、1000倍，分别取各稀释液1Ml，用倒置小玻璃管加入到胆盐乳糖培养基溶液(10Ml/管)中。大肠菌群测定大肠杆菌是指一组能发酵乳糖、产酸(培养基原来的颜色是红色，如果产酸就会变黄)、产气、需氧、兼性厌氧的革兰氏阴性无性杆菌。食品中检出大肠菌群，说明该食品已被粪便污染。

大肠菌群的最可能数量搜索表中的值，这些值是按概率计算的。因为在国内大肠菌群检查中，对样品采用了三种不同的lo倍递减接种量，每种接种量接种三个乳糖胆盐发酵管，因此，乳糖阳性试管可能只出现在一个试管组、两个试管组或三个试管组中。